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兽医临床检验学

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兽医临床检验学_第1页
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实验室常规、技巧与注意事项一、 器材的准备和使用二、 化验室用水三、 试剂的使用和管理四、 溶液浓度及其计算五、 试剂配制的有关问题六、 样品测定有关策略七、 血液样品的采取与保存一、 器材的准备和使用 吸管使用方法吸官的选择:大小规格,内径粗细,尖端孔径移取溶液时,先用所移取的溶液润洗吸管内壁 2〜3次,以确保溶液浓度不变、量准确 (洁净、烘干的吸管不必!) 1、定量取液器使用方法1.要定期进行校准,失灵的误差很大;2.选择规格大小适宜的取液器;3.吸头应配匹,安装紧密;吸头的洁净问题4.正确握持取液器;5.吸取时将顶杆揿至第一位(不能揿至第二位!),将吸头尖端浸至被吸取液体的液面稍下,慢慢松开顶杆;6.排液时,将吸头尖端靠在承接溶液器皿的侧壁,边将顶杆揿下经过第一位并直至第二位,边将吸头沿器皿壁轻轻上提;7.吸取黏滯性大的液体时,可将吸头尖端切去小部分; 8.调节钮不得旋至超过最大允许容量;9.长时间不用时最好将调节钮调至最 大容量刻度处;10.取液器不用时垂直挂放(吸有机溶 剂,酸、碱溶液时更应注意);11.不要像耍玩具一样来回抽动顶杆与旋转调节钮2、容量瓶的使用何时应使用容量瓶?1.容量瓶选择规格、刻线2.可先用溶剂荡涤容量瓶数次3.固体试剂放在小烧杯内溶解后,再转移入容量瓶,用玻棒导引,也可用漏斗。

4.溶质要充分溶解,必要时加热或撹拌;用溶 剂洗涤烧杯3〜4次,一并转入容量瓶中5.当溶液盛至容积约3/4时,将容量瓶摇晃作初 步混匀,再加至刻度 (最后逐滴加)6.观察刻度时,视线应与标线的最低点相切7.盖好容量瓶塞,将溶液 充分混匀8.从满的容量瓶中取用溶 液时,应先将颈段溶液倾去注意:1.热溶液应在冷却至室温后,才能注入容量瓶中,否则会造成体积误差;2.不应将容量瓶作试剂瓶使用;3.量器不能高温烘干3、电子天平使用注意⑴天平应置稳定、洁净台 面上环境干燥⑵天平不得经常移动,移动后应调节水平,并用标准缺码校正⑶向称量台放置秤量物品应轻拿轻放⑷所称物品(含器皿)不得超过天平最大秤量5)称取精度要求不高、量大的物品不要用精密 电子天平 (6)不得称量酸、減等腐蚀性、挥发性物品(7)严禁样品与称里盘直接接触,不应将试剂、 样品洒落天平内(使用称量纸时尤应注意!)8)称量完毕,及时清理称量室称盘和天平周围遗留物关好天平门 4、玻璃器皿的洗涤方法新玻璃的清洗:1.因新玻璃器皿含有游离碱,应先放入2% 盐酸中浸泡数小时;2.取出后用自来水反复冲洗;3.再用温肥皂水浸泡、刷洗;4.用自来水冲干净;5.最后经蒸馏水冲洗3遍,烘干备用。

用过的试管、离心管的清洗:1.试管用后及时倒去溶液, 用水冲洗,不能让其干涸2.以温热洁净水或肥息水浸 泡.用试管刷刷洗上下两三次,到底扭一扭”3.用自来水冲洗,直至汰干净,一般可浸泡 数小时,其间多次(10次以上)换水4.用少量蒸馏水分多次洗涤,洗去所沾自来 水,晾干或烘干5、超声波清洗器1.由超声波发生器发出高频信号,通过换能器转换成高频机械振荡而传播到介质一 一清洗溶剂中人听觉20〜20 000Hz,>20000HZ声波→超声波)2.清洗原理:超声波疏密相间地向前辐射,使液体流动而产生数以万计Ф50~500μm微小气泡,在负压区形成、生长,而在正压区迅速闭合——“空化”效应 气泡闭合连续不断地产生瞬间高压,就像一连串小“爆炸” 不断地冲击物件表面,从而达到清洗净化目的3. 使用方法①  在清洗箱中加入水,使待清洗物品淹没, 加适量清洁剂能改善洗涤效果加水亦不能过满,以免溢出,造成电子短路②  将网架放入清洗箱中,将待洗物品放入网 架内若物品直接放入、接触仪器底部,不仅影响洗涤效果,还会损坏仪器!③  将电源插头插入 220V/50HZ电源插座,打开电源开关,指 示灯亮④  仪器设置:(1)按“确认”键,“状态”指示灯闪跳;(2)按“功能”键至所需设定的功能(如时间、 温度及功率),则该功能指示灯变红;(3)按“确认”键至要调节的数字位闪动,调节 “< >”键至所需设定参数值;(4)以(2)、(3)相同步骤设定功率(50%〜 100%)、温度(5〜80)等参数;(5)按“停止”键,设定完成。

⑤  一般工作条件:清洗或脱气超声频率40KHz (100%);清洗一般物品,工作时间20min左右;温度一般不超过50 °C(超声过程中温度会升 高,洗不耐温物品时温度不能设太高)可根据物件大小和污垢状况合理设定,必要时 作预试确定⑥  按“运行”键,仪器开始工作运行中需要停 止工作时可按“停止”键⑦  超声清洗结束后,应将物品及时取出,用流 水冲洗清洗箱内水应经常更换★⑧  切勿将强酸、强碱及其它腐蚀箱体的化学品 放入或接触本清洗器不得将水进入仪器内 部及有关操作键★⑨  清洗器不能长时间工作(绝不要超过30min), 在保证清洁前提下尽可能缩短时间,必要时 采取间断性工作6、高速冷冻离心机使用注意事项1、 使用规格相同的离心管,严格配对配平 离心管盖、套管应统一配平,用密度相同的液体做配平管2、 离心管内液体不能装得太满,以免溢出3、 正确设定所选用的离心转头4、 设定离心温度、速度和时间, 或选择已储存的离心程序5、 转速不能超过所用转头的限定转速24x1.5ml角转头 18750 r/min (33016xg)*8x50ml角转头 14000 r/min (21255xg)*4x200ml水平转头 4400r/min( 3074xg )6、使用完毕应将机仓和转头内可能沾有的污物 擦干净,敞开仓盖让水汽蒸发;仓内已干燥、 长时间不用时关上仓盖。

★7、 (旧)机械^定时器不能回转8、 (旧)调速开关旋钮应缓慢旋转加速9、不需冷冻、转速不高的勿使用冷冻离心机!勿以流氓、土匪方式野蛮操作仪器!7、铬酸洗液处理玻璃器皿洗液配制:取工业重铬酸钾l000g,加热水 l0000mL,搅拌助溶,冷后向其中缓缓加 入浓硫酸2 000mL(速度不能过快,以免产 热而使容器破裂,更不能反过来加)储放:以耐酸陶瓷缸配制和贮存,也可用耐热塑料容器配制,冷后移入并酔存于玻盖玻璃瓶(缸)中备用特点:具有很强的氧化性,对有机物和油污的去除能力特别强注意事项:①  如玻璃器皿太脏,须先用自来水和毛刷洗刷倾尽水后再入洗液浸泡,以免洗液被稀释②  以温热的格酸洗液浸泡,洗涤效率更佳(难)③  洗液浸泡后的器皿,应先用自来水彻底冲净 (尤其培养用器m),再用蒸馏水润洗2〜3次④  铬酸洗液吸水性强,应随时把容器盖严,以 防吸水而降低去污能力当出现绿色时,不能继续使用⑤  洗液腐蚀性极强,易灼伤皮肤及损坏衣物,配制和使用时应注意安全★⑥  本洗液不适于金属、有机玻璃及沾污有钡 盐、铅盐的器皿⑦  废弃的洗液不能随意乱倒,以免锈蚀下水管,并污染环境塑料器皿的洗涤①  小吸头、小离心管较难洗净,除非逐个洗、冲、漂②  塑料培养皿不能用毛刷子刷,用后立即用水冲,防止干涸。

试用脱脂柔软纱布③  以2%氢氧化钠浸泡过夜,水冲;④  以5%盐酸浸泡30min;⑤  以自来水、蒸馏水洗漂、浸泡数遍,晾干,备用橡胶制品的洗涤①  新的橡胶制品带有滑石粉,需先用自来水漂洗干净;②  用2%氢氧化鈉煮20min,水冲洗5〜6次;③  再用1. 3%盐酸煮30min;④  分别用自来水、蒸馏水漂洗,晾干,包装、灭菌不能烘烤,高压时控制10 lbf)二、化验室用水蒸馏水器使用注意事项:①  进、出水管和阀要用聚乙烯制成,需用橡皮管的也要尽量短些冷却水可用胶管②  用市售的蒸馏水作再蒸馏,比直接用自来水作蒸馏效果要好③  使用一段时间后,蒸馏瓶内水要换新,贮水容器要清洗;④  冷却水保持一定压力;若停自来水且热敏保护器失灵有爆裂危险⑤  调节进水管流速,防止蒸德瓶内水蒸干或过满;发现蒸馏瓶内水过少应立即切断电源,不能马上进水特别注意:重蒸馏水器、高压灭菌锅、高温烘箱、电炉等使用中要有人看护,记住按时关闭!杜绝事故发生!(二)离子交换水①  离子交换法制得化验用水,称去离子水或离子 交换水能除去原水中绝大部分盐、碱和游离酸,但不能完全除去有机物和非电介质②  离子交换柱若长期不用,会荤生细菌,污染离 子交换柱。

③  离子交换树脂使用一定时间后会失去交换能 力阳(阴)离子交换树脂可分别用酸(碱)再 生处理,重复使用三)超纯水制备装置使用与注意事项:①  以蒸馏水、去离子水作为制备超纯水的水源,可延长纯化柱寿命②  超纯水器不使用时置“OFF”状态,也定时自动循环,因此电源要常接通③  保持贮水桶内有一定水量,防止空气进 入及纯化柱脱水④  较长时间不使用时,贮水桶内水也要定期更换,防止源水变质⑤  取水枪头勿接触接水容器口,防止污染⑥  冬天防冻⑦  超纯水成本很高,不得作 普通蒸馏水和双蒸水使用三、试剂的使用和管理1、称取前核实所取试剂是否有误,进口试剂往往要对英文名称,以防差错生化试剂要注意同分异构体,左旋或右旋,氧化型或还原型等2、注意试剂含结晶水的多少,要查对分子量 再计算试剂用量3、试剂规格是否符合要求4、 在某些要求较高或特殊的分析中,不仅要考虑试剂的等级,还应注意生产厂家、产品 批号等必要时应作专项检验和对照试验5、 注意试剂有否变质6、用清洁的牛角勺或不绣钢匙从试剂瓶中取出试剂,一药一匙7、所有试剂、溶液以及样品的包装瓶上必须有标签,脱落的要及时补上8、根据试剂的毒性、易燃性、腐蚀性和潮解性等不同特点,以不同方式妥善保管。

9、优先使用已开瓶的试剂,杜绝浪费,私藏试剂安全使用:(1)剧毒试剂应专人严格保管、谨慎操作;(2)会产生有害气体的应在通风橱中操作;(3)易燃溶剂加热时,必须在水浴或沙浴中进行,避免使用明火; (4)操作腐蚀性强的试剂(如高氯酸、硫酸、蛋白酶k、胶原酶等)应戴防护手 套、防护眼镜; (5)试剂绝不可用舌头品尝,更不得食用, 也不作药用不用茶杯、食具盛装试 剂,更不要用烧杯等当茶具使用 (6)不能使用的化学试剂、废液要慎重处 理,不能随意乱倒 (7)装过强腐蚀性、可燃性、有毒或易爆物品的器皿,操作者应亲自洗净或处理掉8)化验室中应备有急救药品、消防器材和劳保用品四、溶液浓度的表示及其计算常用的表示方法有:百分浓度、质量浓度 、物质的量浓度、体积比浓度、相对密、质量摩尔浓度等,其中百分浓度、质量浓度、物质的量浓度最常用一) 百分浓度1.质量百分浓度:即100g溶液中所含溶质的克数符号为“ % (m/m)”或Am市售液体试剂浓度一般都以此表示2. 体积百分浓度:物质B的体积分数,常用%(V/V)表示3. 质量体积百分浓度:以100mL溶液中所含固体溶质的克数表示,即% (m/V)如 0.9%NaCl、10%TCA 等。

目前多用g/L取代二) 质量浓度即质量体积浓度,指单位体积(1L)溶液中所含物质的质量(g)质量浓度=10*质量体积百分浓度(三)物质的量浓度*指单位体积溶液中含溶质B物质的量,即1L 溶液中所含溶质的量(摩尔,mol)常用单位:mol/L、mmol/L、μ mol/L等,可简化为M、mM、μ M,正式使用不要简化■量浓度的计算方法:量(g)=量浓度(mol/L) ×摩尔质量(g/mol) ×体积(L)①eg:溶质为固体时例:如何配制0.5mol/L Na2C03溶液500 mL?(Na2CO3 的 MW为 106)解:m(Na2CO3)=0.5 × l06 ×500 ÷ 1000=26.5(g)〇称Na2CO3 26.5g溶于适量水中并定容至500 mL②eg:溶质为溶液(液体)时例:如何配制0.5mol/L H3P04溶液500mL?(H3P04 MW为98,浓磷酸比重1.69、浓度85%)解:m(H3PO4)=0.5 x 98 x 500 ÷ 1000=24.5(g)V0=24.5 ÷ 1.69÷85% ≈17 (mL)量取浓磷酸17mL,加水稀释并定容至500mL四)溶液稀释原理:稀释前后溶质的总量不变。

C1×V1=C2×V2例:用 2mol/L 的 H2SO4溶液配制 500mL 15mmol的H2SO4溶液,怎样配制?解:V1=C2×V2÷C1=0.015 × 500÷2=3.75(mL)取2mol/L的H2SO4溶液3.75mL,加水稀释,使总体积为500mL,即成五、试剂配制的有关策略I、根据需用量配制,可略多些,不应配得太多而浪费,贵重试剂尤应特别注意节约2、有些试剂要现配现用,如GSH-Px测定用的底物、H2O2等,只能配当天的用量3、有些试剂可较长时间保存,则可预计一定 时间内的用量配制有些溶液可配成数倍浓 1度贮存液,用前稀释4、如何准确配制少量试剂?5、 根据试剂的性质和量选择试剂瓶:耐碱、 避光、耐低温、大小瓶盖应密闭性好6、试剂瓶上应贴标签,标明试剂名称、浓度、用途、配制日期、保存方法及使用者等7、同一实验室内普通公用试剂不要重复配制8、需冻藏的溶液,应分装后冻存,每次取出一瓶解冻使用,不宜大包装、反复冻融9、试剂溶液要定期清理放置整齐,用后归还原处重要试剂、样品的处置要慎重!六、样品测定的有关策略1、考虑项目中哪些试剂的配制、加量要求十分准确一般而言,标准液、测定底物剩余量 项目的底物其配制和加量要求严格。

2、试剂配好后,正式测定样品前,要作少量 预试尤其样品量少、难重复采集的3、待测成分稳定时间短的项目优先做,合 理分工协作巧安排4、每批测定最好B、S作双份或3份,防止因B或S管的误差影响所有U的准确性样品较多时,要在前、末及中段设S 5、有些项目的空白管OD变化较大,除用B调 “0”外,可用DW调“0”,ODU-ODB6、大数量样品的分批测定,保证准确性前提 下每批完成最多数量样品:保证加样和作 用时间的相等,保证颜色或浊度的稳定反应作用时间要求准确;显色或浊度稳定时间短的,每批样品数不宜多,如10〜20 个,例GSH-Px、1分钟胆红质测定作用时间不十分要求严格;显色或浊度稳 定的,每批样品可适当多,如30 ( —个试管 架)或60个(两个试管架)7、注意加样或加试剂及比色过程的一致性 如加底物和样品是按从前至后的顺序,加 终止反应试剂仍应按此顺序,不能颠倒确保时间一致8、使用标准曲线计算测定结果的项目,如 ALP、ALT等,应定期校正标准曲线,特别仪器大修后应重新制标准曲线9、按原试验组排序测定样品,有利于减小组内 差异,但可能造成人为差异,可打乱分组排序或倒序测定双盲编号?10、对照组结果直接影响试验分析,应保证条 件一致,样品不被沾污。

测定临成^样品时取 好有健康动物样品同时做11、已测样品应保留一定时间,以备核查但 过期样品应及时、妥善处理12、如何衡量某测定方法的可靠性及操作 者的技术熟练程度?(1)重复性试验:每个样品作2〜3个平行管, OD<0.015;不同时间、人员,OD<0.032)多次重复测定结果的误差(精密度)应在5% 以内,最大不超过10%3)作回收试验,加一定量标准液后测定,回收率符合要求4)加0.5x、lx、l.5x及2x样品进行测定,计算结果是否相符5)插入参考或定值血清进行测定6)显色反应以普通分光光度计(如721型) 测定的OD在0.1〜0.8之间最佳7)使绝大多数测定样品性范围内,线 性范围满足健康和病理样本8)部分测定样品结果太高或太低,应将样 品作稀释或加量七、血准样品的采取与保存符合要求的样品是获得正确结果的基础、保 证:量够、新鲜,不浑浊、不溶血、无凝 块、无污染,有标签、有记录1、采取量:最大采样量,试验需用量小白鼠BW25g,总血量2〜2.5mL,心脏穿 刺可采血0.7 mL*大白鼠BW 325g,可采血9mL(占体重1/36, 最多可收集到体重5%〜8%的血量)豚鼠BW 480g,可采血19mL左右(占体重 4%,血液总量占体重4.5% ~ 8.1%)。

成年兔每次可采血20mL切断颈静脉放血 可得到体重1/45的血液■ 2、常规采血途径:鼠从尾尖、眼球、心脏穿 刺,以及麻醉、剖腹后从 腹主动脉采血;*兔从耳静脉或心脏木血;*猪可从耳静脉及前腔静脉采血; *羊及大动物从頭静脉采血奶牛尾部血管采血法*操作者左手抬起牛尾,在 尾内侧、离肛门4〜15cm*用5〜10mL—次性注射器、9号针头于正中凹陷处刺入3〜8mm,有时刺过血管,要抽出少许, 能采血3〜5mL甚至10mL3、血清制备:以离心管接耳又血液,加塞(?);置室温或37°C水浴半至1小时;1500r/min 离心 15min;以巴氏吸管吸出上层血清;一般10mL血液可制备4mL血清;若血凝块与管壁粘在一起,可用针尖剥 离开,易于分离血清4、血液抗凝与血浆制备:血浆的优缺点* 柠檬酸钠含3Na、2H20,MW 294.12,常 用浓度为109 mmol/L(32.06g/L)此溶液与血液按1:9混勾即可抗凝但魏氏法血沉测定 时比例为1:4EDTA-Na2∙H2O(MW336.21)或 EDTA-K2∙2H2O (MW 404.47),1.5 ~2.2mg可抗凝lmL血液肝素钠或钾盐粉剂(100〜125 U/mg),配成 5g/L (5mg/mL)水溶液,每管中加O.lmL, 于37〜50°C烘干后使用,可抗凝5mL血液。

用肝素钠水溶液湿润注射器后采血,使用 方便且抗凝效果好缺点:使样品稀释且稀释度不一;可能会产 生溶血用生理盐水配制,但增加影响因素或用商品化真空采血管5、采取、制备样品时注意事项:(1)考虑某些因素对测定项目的影响,如运动直后PCV、WBC增加,持续运动使CK、AST、LD升高;应激使血糖升高,WBC增多2)采样前应禁食8〜10h,采食对血糖、血脂产生影响,脂血症还对一些项目检验有影响 (3)动态试验时应固定采样的时间,如于每天的早晨注意多次采血的影响4)防止某些药物对试验结果的影响如输液对血糖、Na+、K+、Ca2+的影响5)防止溶血溶血对某些项目有影响采血用的针头、试管等均需消毒并烘干6)注意抗凝剂对某些测定项目的影响6、样品的保存注意保存的温度、期限等,多数项目于 冰箱冻存可稳定3〜4d,但不能反复冻融有些项目需及时测定!。

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